XII Curso en Métodos Rápidos en Microbiología de Alimentos y Agua

Curso OnLine por Internet. 100 horas. Duración: 13 semanas.
PRÓXIMA EDICIÓN: del 15 de octubre de 2012 al 10 de enero de 2013. Abierto el período de matrícula

Preinscripción

Actividad docente Acreditada por la Comisión de Formación Continuada de las Profesiones Sanitarias del Sistema Nacional de Salud. Está Acreditación es válida en todo el territorio nacional Edición acreditada con 13,4 CRÉDITOS http://fundacion.usal.es/metodosrapidos

¿Por qué un curso de métodos rápidos?

La necesidad de métodos rápidos de análisis es cada vez mayor, tanto en el control oficial de alimentos, como en la industria alimentaria.

Los análisis microbiológicos se aplican al análisis de materias primas, productos finales, productos intermedios “en línea” y análisis de muestras de ambiente (aire, superficies). Como parte del Sistema APPCC, los métodos rápidos permiten la toma de decisiones en poco tiempo y la aplicación temprana de medidas correctoras. En la mayoría de los casos suponen, además, ahorro de material y de horas de trabajo, y pueden ser muy útiles cuando se analizan un gran número de muestras.

Algunos de ellos, por su sencillez, pueden incluso ser realizados por personal no especializado, mientras que otros son bastante sofisticados y se utilizan sobre todo en laboratorios especializados.

Muchos de estos métodos han sido validados por organismos independientes, por lo que pueden ser utilizados por la Administración en el Control Oficial de alimentos.

¿Cuáles son los Objetivos del Curso?

Conocer los métodos rápidos y automatizados que existen en la actualidad para el análisis microbiológico de alimentos y agua. Su fundamento y aplicaciones prácticas. Ventajas e inconvenientes de cada método.

Ser capaz de elegir el método más adecuado para cada caso que se plantea en el laboratorio, dependiendo del tipo de muestra , parámetros a analizar, objeto del análisis y tiempo de respuesta.

Ser capaz de realizar, en la practica, cada método e interpretar los resultados obtenidos.

¿Cuáles son los Contenidos del Curso?

Consta de unas parte teórica y una extensa parte de Laboratorio Virtual, en la que, de forma interactiva, se explica cada método mediante imágenes y vídeos.

Contenidos teóricos

Módulo 1: Este módulo se divide en 6 unidades donde se explican los distintos métodos rápidos desarrollados hasta el momento basándonos en el fundamento teórico:

• Sistemas de muestreo de superficie: hisopos (PathCheck, ProTec, etc.), placas de contacto RODAC, laminocultivos. Muestreadores de aire.
• Sistemas de recuento y/o estimación de viables y microorganismos indicadores recuento mediante Petrifilm, NeoGrid, Simplate, Colitrack, etc. Sistemas basados en técnicas eléctricas (Bactometer, Malthus, Bactrace, RABIT), colorimétricas (BactAlert, Omnispect, BioSys, Microfoss), microscópicas (epifluorescencia directa), citometría de flujo (D-Count, Bactiflow, Chemscan RDI, BactoCount) y sistemas de estimación de ATP mediante bioluminiscencia.
• Sistemas miniaturizados y/o automatizados de identificación bioquímica: enterotube, API, BBL Crystal, microID, RapID, etc. Descripción, ventajas e inconvenientes.
• Medios cromogénicos y fluorogénicos para el recuento y/o aislamiento de coliformes, Escherichia coli, Enterococos, Staphylococcus aureus, Salmonella, etc.
• Descripción de métodos inmunológicos y recopilación de casas comerciales y de los productos que hay en el mercado en la actualidad. Formatos básicos: aglutinación con látex (pasiva y pasiva inversa), inmunocromatografía, enzimoinmunoensayos (ELISA, EIA, etc.), inmunofluorescencia. Formatos especiales: inmunocrecimiento (sistema Unique), inmunobanda (1-2test), inmunocaptura (dynalbeads, pathatrix) y sistemas inmunológicos combinados con moleculares (PCR-ELISA, Inmuno-PCR).
• Métodos genotípicos basados en hibridación de ácidos nucleicos (GenQuence, sistema VIT, Accuprobe, etc.) y microarrays (FoodExpert) y basados en la amplificación de ácidos nucleicos: PCR ( Bactotype, etc.), PCR en tiempo real (sistema A-BAX, iQ-Check, TaqMan detection kits, LightCycler kits, etc.), NASBA (NucliSens EasyQ Enterovirus) y genotipado de cepas (Riboprinter).
• Por último hemos dedicado una unidad para introducir el concepto de biosensores así como los distintos tipos (biosensores catalíticos que detectan enzimas, células, orgánulos celulares, tejidos y biosensores por afinidad que detectan anticuerpos, receptores, lecitinas, ácidos nucleicos y moléculas biomédicas), su aplicación en la industria alimentaria (desde el punto de vista de la seguridad alimentaria, la calidad alimentaria y el control de procesos). Se incluyen referencias a la validez legal de dichos métodos (Validación/Acreditación por organismos oficiales, como la AOAC, Canadá, AFNOR, etc.).

Módulo 2: i.e. explican los métodos existentes haciendo hincapié en los microorganismos para cuya investigación se utilizan y no tanto en el fundamento teórico:

• Entero bacterias patógenas de transmisión alimentaria: Salmonella, E. coli O157:H7, Shigella, Enterobacter sakazakii.
• Otras bacterias de transmisión alimentaria: Bacillus cereus, Campylobacter spp., Clostridium perfringens, Clostridium botulinum, Listeria spp., Listeria monocytogenes, Staphylococcus aureus, Vibrio spp, etc.
• Detección de virus, parásitos (protozoos, arqueazoos, helmintos, etc.) y otros biopeligros - Métodos de análisis de toxinas bacterianas, micotoxinas.

Los contenidos teóricos del curso se basan en un "texto principal" sencillo (aunque extenso) apoyado en imágenes, y muchos "documentos de consulta" que son textos más extensos y especializados.

Parte práctica. Laboratorio Virtual:
Sistemas rápidos explicados paso a paso mediante imágenes y vídeos. Supuestos prácticos. Interpretación de imágenes y resultados con corrección automática:

• Semana 1: Análisis muestras de aire. Análisis de muestras de superficies de maquinaria y equipo mediante hisopos Path-Chek. Análisis de superficies mediante laminocultivos Hygicult. Evaluación rápida del programa de limpieza mediante el sistema Pro-Tect.
• Semana 2: Recuentos mediante placas 3M Petrifilm. Recuento en placa basado en el método de membrana hidrofóbica: NeoGrid. Recuento mediante Simplate. Buenas prácticas higiénicas, detección mediante detección de ATP por bioluminiscencia.
• Semana 3: Identificación de Enterobacteriaceae mediante Enterotube II. Sistemas de identificación BBL Crystal. Medios cromogénicos y fluorogénicos: Compass Listeria mono, Salmonella Chromogenic Medium Mark II, Agar TBX. Métodos bioquímicos para la identificación de Listeria monocytogenes.
• Semana 4: Métodos inmunológicos rápidos: aglutinación e inmunodifusión. Detección de Salmonella mediante 1-2 Test, inmunoprecipitación. Detección de patógenos con la tecnología UNIQUE. ELISA competitivo para la detección de Aflatoxinas.
• Semana 5: Detección de patógenos basada en la hibridación de ácidos nucleicos: GeneQuence. Detección de patógenos mediante el sistema A-BAX. Detección de patógenos mediante PCR a tiempo real (Real Time PCR). Ribotipado mediante el sistema automatizado Riboprinter.
• Semana 6: Biosensores enzimáticos amperométricos. Biosensor con células enteras. Linfocitos T fluorescentes. Bioluminiscencia y detección de ATP. Bioluminiscencia en limpieza de ordeñadoras.
• Semana 7: Recuento de coliformes y E. coli mediante el sistema Colilert®. Investigación de Salmonella spp. mediante 'Salmonella RapidTest'. Método ELFA con sistema automatizado VIDAS para la investigación de Salmonella. Investigación de Salmonella spp.: sistema UNIQUE y confirmación con aislamiento en agares cromogénicos, identificación bioquímica y serológica.
• Semana 8: Recuento de Staphylococcus aureus mediante Staph Express de Petrifilm. Detección de Campylobacter mediante ELISA en sándwich visual (VIA). Detección de Listeria spp en alimentos, mediante Listeria Rapid Test. Investigación de Listeria monocytogenes mediante el sistema A-BAX.
• Semana 9: Detección de Cryptosporidium spp en agua: filtración, captura inmunomagnética e inmunofluorescencia. Detección de virus mediante PCR en tiempo real: LightCycler. El Control Oficial de Alimentos, los Métodos Rápidos de Detección y la Encefalopatía Espongiforme Bovina. Diagnóstico de gripe aviar.
• Semana 10: Detección de toxinas estafilocócicas mediante Técnicas Inmunológicas, ELISA. ELISA competitivo directo visual para el "screening" de Aflatoxinas: Agrascreen. Cuantificación de deoxinavalenol (DON) mediante ELISA Romer directo competitivo.

Detección de sustancias antibióticas en leche mediante Delvotest®.

El Laboratorio Virtual que hemos concebido presenta la enorme ventaja de que el alumno puede ver (mediante fotos) todos lo posibles resultados de cada ensayo (distintos resultados a cada prueba bioquímica, inmunológica o molecular: positivo, negativo, dudoso; distintos recuentos, etc., distintos tipos de colonias: sospechosas, no sospechosas, dudosas, biosensores).

El alumno es guiado a través del Laboratorio Virtual mediante la realización de ejercicios interactivos y casos prácticos. Todos estos ejercicios se basan en la interpretación de imágenes y resultados.

¿Cuáles son las Estrategias de Aprendizaje?

El curso esta basado en la realización de actividades:

¿A quién va dirigido?

• Profesionales de Industrias Alimentarias.
• Consultores de Calidad de Industrias Alimentarias.
• Responsables de Laboratorio.
• Técnicos de Laboratorio.
• Inspectores de Sanidad de la Administración.
• Licenciados y diplomados en busca de empleo en el sector de control de calidad en la industria alimentaria.

Acreditación

Los licenciados en Farmacia, Veterinaria, Ciencia y Tecnología de los Alimentos así como los licenciados en Biología (que sean especialistas BIR), licenciados en Bioquímica (que sean especialistas BIR) y licenciados en Química (que sean especialistas QUIR) dispondrán de la Acreditación de la Comisión de Formación Continuada de las Profesiones Sanitarias del Sistema Nacional de Salud.

Está Acreditación es válida en todo el territorio nacional.

Diploma

A los alumnos que superen el curso, la Universidad de Salamanca expedirá un diploma que certificará 100 horas de docencia.